FASTQ 文件的质控和预处理对于为下游分析至关重要。一般来说,我们每个步骤都会用到不同的软件,比如先用 fasqtc 看看测序质控,再用 trimmomatic 进行质控,或用 cutadapt 去除接头等等。然而大多数软件都是基于高级编程语言(例如Python和Java)开发的,多线程的效率较低。同时,多次读取和加载数据也会导致预处理速度慢,I/O效率低下。在此背景下 FASTP 软件应运而生,它可以仅仅扫描 FASTQ 文件一次,就可以完成比 FASTQC+ cutadapt + Trimmomatic 这三个软件加起来的功能还多很多的功能,而且速度上比仅仅使用 Trimmomatic 一个软件还要快 3 倍左右。
FASTP 的特性
对数据自动进行全方位质控,生成人性化的报告;
过滤功能;
对每一个序列的头部或尾部,计算滑动窗内的质量均值,并将均值较低的子序列进行切除(类似 Trimmomatic 的做法,但是快非常多);
全局剪裁 (在头/尾部,不影响去重),对于 Illumina 下机数据往往最后一到两个 cycle 需要这样处理;
去除接头污染。厉害的是,你不用输入接头序列,因为算法会自动识别接头序列并进行剪裁;
对于双端测序(PE)的数据,软件会自动查找每一对 read 的重叠区域,并对该重叠区域中不匹配的碱基对进行校正;
去除尾部的 polyG。对于 Illumina NextSeq/NovaSeq 的测序数据,因为是两色法发光,polyG 是常有的事,所以该特性对该两类测序平台默认打开;
可以对带分子标签(UMI)的数据进行预处理,不管 UMI 在插入片段还是在 index 上,都可以轻松处理;
可以将输出进行分拆,而且支持两种模式,分别是指定分拆的个数,或者分拆后每个文件的行数。
软件安装
最简单的安装方法莫过于直接下载可执行的软件:
# this binary was compiled on CentOS, and tested on CentOS/Ubuntu
wget http://opengene.org/fastp/fastp
chmod a+x ./fastp
简单上手
fastp -i in.fq -o out.fq
fastp -i in.R1.fq.gz -I in.R2.fq.gz -o out.R1.fq.gz -O out.R2.fq.gz
可以看到,-i
和-o
用来指定 read1 的输入了输出,而大写的-I
和-O
则是用于指定 read2 的输入和输出。同时,fastp 对于输入和输出都支持 gzip 压缩,使用方法也很简单,只要文件名的末尾带有.gz
,就会被认为是 gzip 压缩文件,会启用 gzip 对输入输出进行压缩和解压处理。默认情况下,HTML 报告会保存为 fastp.html(可用-h
参数指定名称),JSON 报告保存为 fastp.json(可用-j
参数指定名称)。
主要功能
1. 质量过滤
fastp 可以对低质量序列,含较多 N 的序列进行过滤,该功能默认是启用的,但可以使用-Q
参数关闭。可使用-q
参数来指定合格的 phred 质量值,-u
参数来指定最多可以有多少百分比的质量不合格碱基。比如-q 15 -u 40
表示一个 read 最多只能有 40% 的碱基的质量值低于 Q15,否则会被扔掉。使用-n
可以限定一条 read 中最多能有多少个 N。fastp 还默认启用了 read 长度过滤。使用-l
参数指定一个 read 至少有多长,比如-l 30
表示长度低于 30 个碱基的 read 会被去掉。
fastp 还几乎包含了 Trimmomatic 软件的所有功能,比如对滑动窗口中的碱基计算平均质量值,然后将不符合的滑窗直接剪裁掉。使用-5
参数开启在 5' 端,也就是 read 的开头的剪裁,使用-3
参数开启在 3' 端,也就是 read 的末尾的剪裁。使用-W
参数指定滑动窗大小,使用-M
参数指定要求的平均质量值。用-f
和-t
分别指定 read1 的头部和尾部的剪裁,使用-F
和-T
分别指定 read2 的头部和尾部的剪裁。
在 fastp 的 HTML 报告中,最开始的 Summary 表格显示了过滤的统计信息:
2. 接头处理
fastp 可以自动化地查找接头序列并进行剪裁,不需要输入任何接头序列。
3. 校正碱基(用于双端测序)
fastp 支持对双端测序数据的每一对 read 进行分析,查找它们的重叠区间,然后对于重叠区间中不一致的碱基,如果发现其中一个质量非常高,而另一个非常低,则可以将非常低质量的碱基改为相应的非常高质量值的碱基值,如下图所示:
上图中所示的标红的 T 碱基是低质量序列,和高质量的 A 不匹配,它会被校正为 A。
除此之外,还可以使用-m
参数,开启合并模式,将双端测序数据进行合并处理。
4. UMI 数据的处理
UMI 在处理 ctDNA 类似的超低频突变检测应用中是十分有用的,为了更好地对带 UMI 的 FASTQ 文件进行预处理,fastp 也很好地支持了对 UMI 标签预处理功能。该功能默认没有启用,需要使用-U
参数开启,另外需要使用--umi_loc
来指定 UMI 所在的位置,它可以是(index1、 index2、 read1、 read2、 per_index、 per_read )中的一种,分别表示 UMI 是在 index 位置上,还是在插入片段中。如果指定了是在插入序列中,还需要使用--umi_len
参数来指定 UMI 所占的碱基长度。还可以使用--umi_skip
来设置 UMI 之后需要跳过的碱基数。fastp 会把 UMI 的信息加入 fastq 文件的 read 名称中,所以 UMI 的信息也会显示在 SAM / BAM 文件中。
举个例子,比如,在我的双端测序文件中,每条 read 的 UMI 插入在 read 的最前端,占 3 个碱基,之后又用了两个随机碱基把 UMI 与 ctDNA 测序数据隔开:
@NB501841:4:HJJW3AFXY:1:11101:5427:1093 1:N:0:CGGCTAAT+NTCGTTCT
CAGTACATCATCTGCTTGATCCATTTTAGTTTTCACTGTGCGAAGACTTTTATGTCTACTATTGGGAACATTCCTTCCTGAAACAGTACAATAATTCAGTGAGAATGTATATACTCTGGAGTAT
+
AAAAAEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEAEEEEEE
代码就是这样写:
fastp --thread 16 --in1 $fq1 --in2=$fq2 --out1 tmp_${fq1}.fq --out2=tmp_${fq2}.fq -U --umi_loc=per_read --umi_len=3 --umi_skip=2
处理完后可以看到双端 UMI 的信息已经加入到第一行的注释中,CAG
即为第一条 read 的 UMI 信息,ATA
则是其反向 read 的 UMI 信息:
@NB501841:4:HJJW3AFXY:1:11101:5427:1093:CAG_ATA 1:N:0:CGGCTAAT+NTCGTTCT
CATCATCTGCTTGATCCATTTTAGTTTTCACTGTGCGAAGACTTTTATGTCTACTATTGGGAACATTCCTTCCTGAAACAGTACAATAATTCAGTGAGAATGTATATACTCTGG
+
EEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEAEEEEEE
这样将 FASTQ 文件进行比对后,UMI 信息也会保存在 SAM / BAM 文件中,进一步可使用同样是 OpenGene 软件库中的 gencore 软件生成 consensus reads,并基于 consensus reads 进行下游分析。
5. 输出文件切分
fastp 软件还可以对输出的 FASTQ 文件进行切分,分成大小均匀的多个文件,这样可以使用比对软件并行地比对,提高并行处理的速度。fastp 支持两种模式,分别是使用参数-s
指定切分后文件的个数,或使用-S
参数指定每个切分后文件的行数。
Reference
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